ऊतक ब्लॉक की मात्रा पर जैविक माइक्रोस्कोप
कंडेनसर के साथ एक जैविक माइक्रोस्कोप इसकी चमक को मध्यम बनाने के लिए कंडेनसर को ऊपर और नीचे ले जा सकता है, और 9 बी की मध्यम चमक प्राप्त करने के लिए चर प्रकाश विश्लेषक के एपर्चर को भी बदल सकता है। यदि प्रकाश सूर्य में है, तो कंडेनसर को उचित रूप से उठाया जा सकता है, और परिवर्तनीय ऑप्टिकल शोर के एपर्चर को उचित रूप से बढ़ाया जा सकता है। यदि प्रकाश बहुत तेज़ है, तो कंडेनसर को उचित रूप से कम किया जा सकता है, और चौराहे के एपर्चर को उचित रूप से कम किया जा सकता है। यदि आप इस मामले में अभी भी चकाचौंध महसूस करते हैं, तो आप एक उपयुक्त फ़िल्टर चुन सकते हैं और इसे कंडेनसर के नीचे ब्रैकेट पर रख सकते हैं। इस तुसाह को एक चमक मिल सकती है जो आपको संतुष्ट करती है। बेशक, ऑप्टिकल रीडिंग के एपर्चर आकार को बदलने और उपयुक्त फिल्टर का चयन करने के लिए कंडेनसर की ऊपरी और निचली स्थिति को समायोजित करने में एक निश्चित अवधि के अभ्यास के बाद अनुभव प्राप्त करना आवश्यक है।
बायोमाइक्रोस्कोप की एक बहुत ही महत्वपूर्ण समस्या यह है कि फ्रीज-सुखाने और राल एम्बेडिंग (एफडी) और फ्रीज-सुखाने के बाद प्रत्येक भाग में 65 तत्वों की सामग्री को सावधानीपूर्वक संभाला जाना चाहिए, ताकि अवलोकन और विश्लेषण की जाने वाली कोशिकाओं को नुकसान न पहुंचे। क्योंकि एक्स-रे माइक्रोएनालिसिस में न केवल कई चरण शामिल होते हैं, बल्कि इसमें बहुत अधिक लागत भी आती है, यदि विश्लेषण की गई कोशिकाएं दीर्घकालिक और बहु-चरणीय उपचार के बाद क्षतिग्रस्त कोशिकाएं या मृत कोशिकाएं हैं तो गलत निष्कर्ष निकालना बहुत खेदजनक है। उदाहरण के लिए, कोलेजनेज़ उपचार द्वारा अलग की गई मायोकार्डियल कोशिकाओं के दो रूप होते हैं, एक लंबी छड़ और दूसरा गोल। उत्तरार्द्ध एक मरने वाली कोशिका है जो कोशिका पृथक्करण के दौरान क्षतिग्रस्त हो जाती है।
जैविक माइक्रोस्कोप के तहत इन दो प्रकार की कोशिकाओं में इलेक्ट्रोलाइट्स की सामग्री और वितरण बहुत भिन्न होते हैं। गोल मायोकार्डियल कोशिकाओं में Na बहुत अधिक है और K बहुत कम है, और रैखिक डेंड्राइट में Ca सांद्रता बहुत अधिक है। अन्य विश्लेषणात्मक तरीकों की तुलना में, यह सिद्ध हो गया है कि गोलाकार कोशिकाओं में उच्च Na और निम्न K और माइटोकॉन्ड्रिया में उच्च Ca कोशिका पृथक्करण के दौरान कोशिका झिल्ली क्षति के परिणाम हैं। कोशिकाओं और ऊतकों की शीत स्थिरीकरण विधि में अक्सर उन्हें पहले शमन करके ठीक किया जाता है, और फिर उन्हें तरल नाइट्रोजन में संग्रहित किया जाता है। संरक्षण प्रभाव के लिए शमन निर्धारण बहुत महत्वपूर्ण है। जीवित कोशिकाएँ या ताज़ा ऊतक पानी से भरपूर होते हैं। शमन करते समय, अक्सर ऐसा होता है कि कोशिकाओं या ऊतकों के वे हिस्से जो क्रायोप्रोटेक्टेंट्स के सीधे संपर्क में होते हैं (विशेषकर जब तरल नाइट्रोजन के साथ शमन करते हैं) पहले जम जाते हैं और स्थिर हो जाते हैं, इस प्रकार एक "शेल" बनता है, जो केंद्रीय भाग के जमने और स्थिर होने में बाधा उत्पन्न करता है। कोशिकाओं का हिस्सा. इसलिए, एक्स-रे माइक्रोएनालिसिस करते समय अक्सर पाया जाता है कि बड़ी कोशिकाओं के केंद्र में बर्फ के क्रिस्टल होते हैं। ऐसा होने से रोकने के लिए, एक ऐसे पदार्थ का उपयोग शीतलन एजेंट के रूप में किया जाता है जिसका गलनांक तरल नाइट्रोजन से अधिक होता है लेकिन सुखाने का तापमान 806c से कम होता है। ऐसे कई पदार्थ हैं, लेकिन सबसे आसानी से उपलब्ध पदार्थ सांद्रित प्रोपेन (क्वथनांक-42．120c, गलनांक-187．10c, आणविक भार-44.1) है, जिसमें होता है सबसे तेज़ शीतलन गति। लेकिन इसका नुकसान ज्वलनशीलता है.
जैविक माइक्रोस्कोप मांसपेशी फाइबर को एक विशेष फ्रेम पर रख सकता है, और जब मांसपेशी फाइबर एक निश्चित चरण में सिकुड़ता है और उसे ठीक करने की आवश्यकता होती है, तो नोजल तुरंत शुरू हो जाता है, ताकि तरल प्रोपेन को बुझाने और ठीक करने के लिए मांसपेशी फाइबर पर स्प्रे किया जा सके। यह। फिर, मांसपेशी फाइबर को रैक के साथ बाहर निकाला जाता है और तरल नाइट्रोजन में डाल दिया जाता है। यदि रक्त कोशिकाएं या अलग कोशिकाएं स्थिर हैं, तो कोशिकाओं को केंद्रित करने के लिए पहले कम गति पर अपकेंद्रित्र करें, कोशिकाओं को अच्छी तापीय चालकता के साथ एक चांदी की छोटी ट्यूब में स्थानांतरित करें, और छोटी ट्यूब को जमने और ठीक करने के लिए तरल प्रोपेन में डालें। हॉल प्रयोगशाला में चूहे के अग्न्याशय को ठीक करते समय, दो स्टील ब्लॉकों को तरल हीलियम (या तरल नाइट्रोजन) के साथ पहले से ठंडा किया गया था, और दो तांबे के ब्लॉकों को सरौता के साथ अग्न्याशय के सामने और पीछे रखा गया था, ताकि चाची को बुझाया और ठीक किया जा सके। ऊतक या कोशिकाओं को बुझाने और स्थिर करने और तरल नाइट्रोजन में स्थानांतरित करने के बाद लंबे समय तक संग्रहीत किया जा सकता है।
